糖質生化学研究室 - 摂南大学理工学部 生命科学科

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糖質生化学研究室

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個人DB：研究者詳細 - 大橋　貴生 (setsunan.ac.jp)
個人HP：under construction

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教員名・職位　大橋 貴生 准教授

研究テーマ：植物および真菌由来の機能性糖質の代謝メカニズムの解析とその応用
研究分野：生化学　遺伝子工学　糖鎖生物学　応用微生物学
研究のキーワード：ペクチン　フラボノイド　機能性食品　酵母　発酵

2022_ohashiclass.jpg研究内容：機能性糖質は、糖が連なった高分子である糖鎖を成分とした生体分子の総称です。機能性糖質の中で、糖鎖はタンパク質、脂質、核酸などと共有結合した複合糖質として存在しています。全ての細胞はこの機能性糖質を成分として含んでおり、様々な生命現象に関わっています。当研究室では、機能性糖質代謝の分子メカニズムを解明する基礎研究、また微生物を用いた機能性糖質の醗酵生産へと展開する応用研究を通じて、持続可能な社会の発展に貢献できることを目指しています。具体的には、主に以下の２つの研究テーマについて取り組んでいます。

  1. 植物細胞壁マトリックス多糖であるペクチン代謝の分子メカニズムの解明
    　植物細胞は多糖を主要な構成成分とする細胞壁と呼ばれる組織で覆われています。細胞壁多糖はいわゆるバイオマスの主な成分で、さらにセルロース、ヘミセルロース、ペクチンに大別されます。その中でもペクチンは酸性糖を主成分とする酸性多糖で、細胞間の接着や細胞の成長に重要な役割を果たしていることが知られています。また、ペクチンはゲル化する性質が知られ、日常的に食品素材としても利用されています。しかし、ペクチンの構造は非常に複雑で、植物の中でペクチンがどのように代謝されているか、まだ良く分かっていません。当研究室ではペクチン代謝に関与する酵素を同定・解析しながら、ペクチン代謝の分子レベルでの仕組みを明らかにしていきます。このペクチン代謝の仕組みが分かることで、様々なストレス環境下でも生育できる植物を育種したり、バイオマスの安定生産技術に応用したり、生分解性プラスチック素材や機能性食品の開発に応用したりすることが期待されます。
  2. 酵母を用いた機能性フラボノイド配糖体の醗酵生産
    　フラボノイドはポリフェノールの一種で、２つのベンゼン環が３つの炭素で繋がったフラバンと呼ばれる共通の基本骨格を持つ天然に存在する有機化合物群の総称で、天然から8,000種類を越えるフラボノイドが発見されています。また、フラボノイドは漢方薬や民間で伝承されてきた地場の薬の有効成分としても知られており、抗酸化作用、抗アレルギー作用、動脈硬化予防効果等、ヒトの健康維持・増進に様々な有用な機能性を持つことが知られていています。フラボノイドの多くは多種多様な糖が付加した配糖体として存在しており、その糖の組成や構造が変わると、機能性に大きく影響を与えることが知られています。例えば、グレープフルーツに含まれるナリンギンと呼ばれるフラボノイドは苦味配糖体として知られ、ラムノース（Rha）α1,2-グルコース（Glc）二糖がフラボノイド骨格に結合しています。このRha-Glc間の結合がα1,6-結合に変わると苦味が消失します。つまり、糖鎖の構造を変えることにより、フラボノイド配糖体の機能性を変化させることができるようになります。当研究室では配糖体化に関わる酵素遺伝子を導入した組換え酵母を用いて、様々な糖鎖構造を持った機能性フラボノイド配糖体の醗酵生産に取り組んでいます。この酵母を用いた醗酵生産系を用いることで、様々な種類の糖鎖を持ち、新しい機能性を持ったフラボノイド配糖体を安価にかつ大量に生産することができるようになります。

業績

学術論文
  1. Fukunaga T, Sakurai Y, Ohashi T, Higuchi Y, Maekawa H, Takegawa K*. Overexpression of cell-wall GPI-anchored proteins restores cell growth of N-glycosylation-defective och1 mutants in Schizosaccharomyces pombe. Appl Microbiol Biotechnol. 105:8771-8781. (2021) (First two authors equally contributed to this work.)
  2. Misaki R*, Iwasaki M, Takechi H, Yamano-Adachi N, Ohashi T, Kajiura H, Fujiyama K. Establishment of serum-free adapted Chinese hamster ovary cells with double knockout of GDP-mannose-4,6-dehydratase and GDP-fucose transporter. Cytotechnology. 74:163-179. (2022)
  3. Ohashi T, Sari N, Misaki R, Fujiyama K*. Biochemical characterization of Arabidopsis clade F polygalacturonase shows a substrate preference toward oligogalacturonic acids. J Biosci Bioeng. 133:1-7. (2022)
  4. Sariyatun R, Florence, Kajiura H, Ohashi T, Misaki R, Fujiyama K*. Production of human acid-alpha glucosidase (GAA) with a paucimannose structure by glycoengineered Arabidopsis cell culture. Front Plant Sci. 12:703020. (2021)
  5. Fukunaga T, Tanaka N, Furumoto T, Nakakita, SI, Ohashi T, Higuchi Y, Maekawa H, Takegawa K*. Substrate specificities of α1,2- and α1,3-galactosyltransferases and characterization of Gmh1p and Otg1p in Schizosaccharomyces pombe. Glycobiology. 31:1037-1045. (2021)
  6. Kajiura H, Miyauchi R, Kakudo A, Ohashi T, Misaki R, Fujiyama K*. Bombyx mori β1,4-N-acetylgalactosaminyltransferase possesses relaxed donor substrate specificity in N-glycan synthesis. Sci Rep. 11:5505. (2021)
  7. Wu CC, Ohashi T, Kajiura H, Sato Y, Misaki R, Limtong L, Fujiyama K*. Functional characterization and overexpression of ∆12-desaturase in the oleaginous yeast Rhodotorula toruloidesfor production of linoleic acid-rich lipids. J Biosci Bioeng. 131:631-639. (2021)
  8. Ohashi T, Hegi S, Fukunaga T, Takegawa K*. Golgi localization of glycosyltransferases requires Gpp74p in Schizosaccharomyces pombe. Appl Microbiol Biotechnol. 104:8897-909. (2020)
  9. Ohashi T, Fujisawa Y, Hayes MR, Misaki R, Pietruszka J, Fujiyama K*. Transglycosylation toward naringenin-7-O-glucoside using an N180H mutant of Coprinopsis cinerea endo-β-N-acetylglucosaminidase. Biochem Biophys Res Commun. 530:155-9. (2020)
  10. Ohashi T, Tanaka T, Tanaka N, Takegawa K*. SpMnn9p and SpAnp1p form a protein complex involved in mannan synthesis in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. J Biosci Bioeng. In press. (2020)
  11. Wu CC, Ohashi T, Misaki R, Limtong L, Fujiyama K*. Ethanol and H2O2 stresses enhance lipid production in an oleaginous Rhodotorula toruloides thermotolerant mutant L1-1. FEMS Yeast Res. 20:foaa030. (2020) (First two authors equally contributed to this work.)
  12. Kajiura H, Nakamura Y, Nishimura M, Ohashi T, Misaki R, Fujiyama K*. Characterization of Bombyx mori N-acetylglucosaminyltransferase II splicing variants. Biochem Biophys Res Commun. 529:404-10. (2020)
  13. Fukunaga T, Tanaka N, Furumoto T, Nakakita, SI, Ohashi T, Higuchi Y, Maekawa H, Takegawa K*. Characterization of N- and O-linked galactosylated oligosaccharides from fission yeast species. J Biosci Bioeng. 130:128-36. (2020)
  14. Nguyen TS, Misaki R, Ohashi T, Fujiyama K*. Enhancement of sialylation in rIgG in glyco-engineered Chinese hamster ovary cells. Cytotechnology. 72:343-55. (2020)
  15. Bunsangiam S, Sakpuntoon V, Srisuk N*, Ohashi T, Fujiyama K, Limtong S. Biosynthetic pathway of indole-3-acetic acid in basidiomycetous yeast Rhodosporidiobolus fluvialis. Mycobiology. 47:292-300. (2019)
  16. Ohashi H, Ohashi T, Misaki R, Fujiyama K*. Arabidopsis thaliana α1,2-L-fucosyltransferase catalyzes the transfer of L-galactose to xyloglucan oligosaccharide. FEBS Lett. 593:187-94. (2019)
  17. Tsai YY, Ohashi T, Wu CC, Batta D, Misaki R, Limtong S, Fujiyama K*. Delta-9 fatty acid desaturase overexpression enhanced lipid production and oleic acid content in Rhodosporidium toruloides for preferable yeast lipid production. J Biosci Bioeng. 127:430-40. (2019)
  18. Wu CC, Tsai YY, Ohashi T, Misaki R, Limtong S, Fujiyama K*. Isolation of a thermotolerant Rhodosporidium toruloides DMKU3-TK16 mutant and its fatty acid profile at high temperature. FEMS Microbiol Lett. 365:fny203. (2018)
  19. Priyambada SA, Misaki R, Okamoto T, Ohashi T, Ueda K, Matsuura Y, Fujiyama K*. St6gal1 knockdown alters HBV life cycle in HepAD38 cells. Biochem Biophys Res Commun. 503:1841-7. (2018)
  20. Naphatsamon U, Ohashi T, Misaki R, Fujiyama K*. The production of human β-glucocerebrosidase in Nicotiana benthamiana root culture. Int J Mol Sci. 19:E1972. (2018)
  21. Flores RJD, Ohashi T, Sakai K, Gonoi T, Kawasaki H, Fujiyama K*. The neutral N-linked glycans of the Basidiomycetous yeasts Pseudozyma antarctica and Malassezia furfur (Subphylum Ustilaginomycotina). J Gen Appl Microbiol. in press
  22. Nguyen TS, Misaki R, Ohashi T, Fujiyama K*. Enhancement of glycosylation by stable co-expression of two sialylation-related enzymes on Chinese hamster ovary cells. J Biosci Bioeng. 126:102-10. (2018)
  23. Polburee P, Ohashi T, Tsai YY, Sumyai T, Lertwattanasakul N, Limtong S*, Fujiyama K*. Molecular cloning and overexpression of DGA1, an acyl-CoA dependent diacylglycerol acyltransferase, in the oleaginous yeast Rhodosporidiobolus fluvialis DMKU-RK253. Microbiology. 164:1-10. (2018)
  24. Ohashi H, Wahl C, Ohashi T, Elling L*, Fujiyama K*. Effective synthesis of guanosine 5'-diphospho-β-L-galactose using bacterial L-fucokinase/guanosine 5'-diphosphate-L-fucose pyrophosphorylase. Adv Synth Catal. 359:4227-34. (2017)
  25. Priyambada SA, Misaki R, Okamoto T, Okamoto Y, Ohashi T, Ueda K, Matsuura Y, Fujiyama K*. Cell surface N-glycan alteration in HepAD38 cell lines expressing Hepatitis B virus. Virus Res. 238:101-9. (2017)
  26. Flores RJD, Ohashi T, Kawasaki H, Fujiyama K*. The neutral N-linked glycans of the Ustilaginomycetes yeast Sympodiomycopsis paphiopedili. Yeast. 34:305-17. (2017)
  27. Ohashi T, Jinno J, Inoue Y, Ito S, Fujiyama K, Ishimizu T*. A polygalacturonase localized in the Golgi apparatus in Pisum sativum. J Biochem. 162:193-201. (2017)
  28. Uehara Y, Tamura S, Maki Y, Yagyu K, Mizoguchi T, Tamiaki H, Imai T, Ishii T, Ohashi T, Fujiyama K, Ishimizu T. Biochemical characterization of rhamnosyltransferase involved in biosynthesis of pectic rhamnogalacturonan I in plant cell wall. Biochem Biophys Res Commun. 486:130-6. (2017)
  29. Ohashi H, Ohashi T, Kajiura H, Misaki R, Kitamura S, Fujiyama K*. Fucosyltransferases produce N-glycans containing core L-galactose. Biochem Biophys Res Commun. 483:658-63. (2017)
  30. Misaki R, Fukura N, Kajiura H, Yasugi M, Kubota-Koketsu R, Sasaki T, Momota M, Ono KI, Ohashi T, Ikuta K, Fujiyama K*. Recombinant production and characterization of human anti-influenza virus monoclonal antibodies identified from hybridomas fused with human lymphocytes. Biologicals. 44:394-402. (2016)
  31. Tsai YY, Ohashi T, Kanazawa T, Polburee P, Misaki R, Limtong S, Fujiyama K*. Development of a sufficient and effective procedure for transformation of an oleaginous yeast, Rhodosporidium toruloides DMKU3‑TK16. Curr Genet. 63:359-71. (2017) (First two authors equally contributed to this work.)
  32. Polburee P, Yongmanitchai W, Honda K, Ohashi T, Yoshida T, Fujiyama K, Limtong S*. Lipid production from biodiesel-derived crude glycerol by Rhodosporidium fluviale DMKU-RK253 using temperature shift with high cell density. Biochem Eng J. 112:208-18. (2016)
  33. Limkul J, Iizuka S, Sato Y, Misaki R, Ohashi T, Ohashi T, Fujiyama K*. The production of human glucocerebrosidase in glyco-engineered Nicotiana benthamiana plants. Plant Biotechnol J. 14:1682-94. (2016)
  34. Roongsawang N*, Puseenam A, Kitikhun S, Sae-Tang K, Harnpicharnchai P, Ohashi T, Fujiyama K, Tirasophon W, Tanapongpipat S. A novel potential signal peptide sequence and overexpression of ER-resident chaperones enhance heterologous protein secretion in thermotolerant methylotrophic yeast Ogataea thermomethanolica. Appl Biochem Biotechnol. 178:710-24. (2016)
  35. Ohashi T, Hasegawa Y, Misaki R, Fujiyama K*. Substrate preference of citrus naringenin rhamnosyltransferases and their application to flavonoid glycoside production in fission yeast. Appl Microbiol Biotechnol. 100:687-96. (2016)
  36. Polburee P, Yongmanitchai W, Lertwattanasakul N, Ohashi T, Fujiyama K, Limtong S*. Characterization of oleaginous yeasts accumulating high levels of lipid when cultivated in glycerol and their potential for lipid production from biodiesel-derived crude glycerol. Fungal Biol. 119:1194-204. (2015)
  37. Srichaisupakit A, Ohashi T, Misaki R, Fujiyama K*. Production of an initial-Stage eukaryotic N-glycan and its protein glycosylation in Escherichia coli. J Biosci Bioeng. 119:399-405. (2015)
  38. Polburee P, Yongmanitchai W, Ohashi T, Fujiyama K, Limtong S*. Barnettozyma siamensis f.a., sp. nov., a lipid-accumulating ascomycete yeast species. Int J Syst Evol Microbiol. 64:3053-7. (2014)
  39. Srichaisupakit A, Ohashi T, Fujiyama K*. Identification of a protein glycosylation operon from Campylobacter jejuni JCM 2013 and its heterologous expression in Escherichia coli. J Biosci Bioeng. 118:256-62. (2014)
  40. Yoritsune KI, Matsuzawa T, Ohashi T, Takegawa K*. The fission yeast Pvg1p has galactose-specific pyruvyltransferase activity. FEBS Lett. 587:917-21. (2013)
  41. Ohashi T, Fujiyama K, Takegawa K*. Identification of novel α1,3-galactosyltransferase and elimination of α-galactose-containing glycans by disruption of multiple α-galactosyltransferase genes in Schizosaccharomyces pombe. J Biol Chem. 287:38866-75. (2012)
  42. Ohashi T, Nakakita SI, Sumiyoshi W, Yamada N, Ikeda Y, Tanaka N, Takegawa K*. Structural analysis of α1,3-linked galactose-containing oligosaccharides in Schizosaccharomyces pombe mutants harboring single and multiple a-galactosyltransferase genes disruptions. Glycobiology. 21:340-51. (2011)
  43. Ohashi T, Nakakita SI, Sumiyoshi W, Takegawa K*. Production of heterologous glycoproteins by a glycosylation-defective alg3och1 mutant of Schizosaccharomyces pombe. J Biotechnol. 150:348-56. (2010)
  44. Matsuzawa T, Ohashi T, Hosomi A, Tanaka N, Tohda H, Takegawa K*. The gld1+ gene encoding glycerol dehydrogenase is required for glycerol metabolism in Schizosaccharomyces pombe. Appl Microbiol Biotechnol. 87:715-27. (2010)
  45. Park JH, Nishidate T, Kijima K, Ohashi T, Takegawa K, Fujikane T, Hirata K, Nakamura Y, Katagiri T*. Critical roles of mucin 1 glycosylation by transactivated polypeptide N-acetylgalactosaminyltransferase 6 in mammary carcinogenesis. Cancer Res. 70:2759-69. (2010)
  46. Ohashi T, Takegawa K*. N- and O-linked oligosaccharides completely lack galactose residues in the gms1och1 mutant of Schizosaccharomyces pombe. Appl Microbiol Biotechnol. 86:263-72. (2010)
  47. Ohashi T, Ikeda Y, Tanaka N, Nakakita S, Natsuka S, Giga-Hama Y, Takegawa K*. The och1 mutant of Schizosaccharomyces pombe produces galactosylated core structures of N-linked oligosaccharides. Biosci Biotechnol Biochem. 73:407-14. (2009)
  48. Ikeda Y, Ohashi T, Tanaka N, Takegawa K*. Identification and characterization of a gene required for α1,2-mannose extension in the O-linked glycan synthesis pathway in Schizosaccharomyces pombe. FEMS Yeast Res. 9:115-25. (2009)
  49. Ohashi T, Ishimizu T*, Akita K, Hase S. In vitro stabilization and minimum active component of polygalacturonic acid synthase involved in pectin biosynthesis. Biosci Biotechnol Biochem. 71:2291-9. (2007)
  50. Ohashi T, Cramer N, Ishimizu T*, Hase S. Preparation of UDP-galacturonic acid using UDP-sugar pyrophosphorylase. Anal Biochem. 352:182-7. (2006)
総説
  1. Matsuzawa T, Ohashi T, Nakase M, Yoritsune K, Takegawa K*. Galactose-specific recognition system in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. Trend Glycosci Glycotechnol. 24:24-42. (2012)
  2. Takegawa K*, Tohda H, Sasaki M, Idiris A, Ohashi T, Mukaiyama H, Giga-Hama Y, Kumagai H. Production of heterologous proteins using the fission-yeast (Schizosaccharomyces pombe) expression system. Biotechnol Appl Biochem. 53:227-35. (2009)
著書
  1. 大橋貴生*：機能性フラボノイド配糖体の醗酵生産、研究ノート、生産と技術、70(1):103-5. (2018)
  2. 大橋貴生*：高等植物のペクチン生合成および分解に関与する糖質関連酵素群：高等植物におけるペクチン合成および分解メカニズム解明の夜明け、今日の話題、化学と生物、55(7):454-6. (2017)
  3. 大橋貴生*：酵母ベクターの種類と歴史、続・生物工学基礎講座 バイオよもやま話、生物工学会誌、95(1):16-9. (2017)
  4. 大橋貴生*：バイオ系のキャリアデザイン 就職支援 OG OB インタビュー編、生物工学会誌、94(6):359-60. (2016)
  5. 大橋貴生*：バイオ医薬品、よくわかるバイオ、フジサンケイビジネスアイ（新聞記事）、5月20日（2015）
  6. 大橋貴生*：今話題の国際交流、若者、生産と技術、67(2):53-5. (2015)
  7. 大橋貴生*：植物細胞壁研究のフロンティア、バイオミディア、生物工学会誌、93(1):37. (2015)
  8. 竹川薫（翻訳者）、大橋貴生（翻訳協力者）：第２０章 真正細菌と古細菌、第２１章 真菌類、監訳・鈴木康夫，木全弘治：コールドスプリングハーバー・糖鎖生物学第２版，丸善株式会社、（2010）
  9. Yasui K, Jinno J, Ohashi T, Ishimizu T*. In vitro synthesis of polygalacturonic acid. Pectins and Pectinase. pp 165 - 173 (2009)
海外および国際学会発表
  1. Ohashi T, Tsai YY, Wu CC, Dolgormaa B, Misaki R, Limtong S, Fujiyama K. Lipid production with enhanced oleic acid content in Rhodosporidium toruloides isolated from Thailand. International Symposium on Microbial Production of Lipids, Dalian Institute of Chemical Physics (DICP), Chinese Academy of Science (CAS), Dalian, China (2019)
  2. Ohashi T, Ohashi H, Kajiura H, Misaki M, Kitamura S, Fujiyama K. Enzymatic production of N-glycans carrying core L-galactose using L-fucosyltransferase. 28th Joint Glycobiology Meeting, AWTH Aachen University, Aachen, Germany (2017)
  3. Ohashi T. Glycoengineering for the potential pharmaceutical protein production in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. Seminar on Yeast Biotechnology: from Fundamental to Industry, National Center for Genetic engineering and Biotechnology (BIOTEC), Pathum Thani, Thailand (2013).
  4. Ohashi T. Structural study of glycans aimed at its application to therapeutic glycoprotein production in the fission yeast. RGJ Seminar Series LXXXVIII. Microbial Resources: Their Biodiversity and Utilization, Kasetsart University, Bangkok, Thailand (2012).
  5. Ohashi T. Production and glycoengineering of heterologous glycoproteins in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. The 5th Thai Mycological Conference and Annual Meeting of Thai Mycological Association, Kasetsart University, Bangkok, Thailand (2010).
  6. Ohashi T, Kanazawa T, Polburee P, Limtong S, Fujiyama K. Development of host vector system in an oleaginous yeast Rhodosporidium toruloides DMKU3-TK16 and screening of other oleaginous yeasts showing high glycerol assimilation. The 23rd Annual Meeting of the Thai Society for Biotechnology, The Imperial Queen's Park Hotel, Bangkok Thailand (2012).
  7. Ohashi T, Nakakita S, Takegawa K. Identification and characterization of novel a1,3-galactosyltransferase genes in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. The 25th International Carbohydrate Symposium (ICS2010), Makuhari Messe International Convention Complex, Chiba (2010).
  8. Ohashi T, Tohda H, Tanaka N, Takegawa T. Characterization of galactosyltransferase-deficient mutants in fission yeast. The fifth International Fission Yeast Meeting, National Olympics Memorial Youth Center, Tokyo (2009).
  9. Ohashi T, Cramer N, Ishimizu T, Hase S. Efficient preparative method of UDP-galacturonic acid Using UDP-sugar pyrophosphorylase. 20th IUBMB International Congress of Biochemistry and Molecular Biology and 11th FAOBMB Congress, Kyoto International Conference Center, Kyoto (2006).
  10. Ohashi T, Ishimizu T, Hase S. Characterization of polygalacturonic acid synthase from pea epicotyl. X Cell Wall Meeting, Hilton Sorrento Palace Congress Centre, Sorrento Italy (2004).

他 省略
国内学会発表
  1. 大橋貴生、光吉祐太朗、間平由梨佳、梶浦裕之、三﨑亮、藤山和仁：シロイヌナズナにおける糸状菌Aspergillus aculeatus 由来ラムノガラクツロナーゼの過剰発現、日本農芸化学会2020年度大会、九州大学（福岡）、2020.3.25-28.
  2. 橘有咲、大橋貴生、松下宗義、三﨑亮、藤山和仁：シロイヌナズナPGE3遺伝子欠損変異体の単糖組成解析、日本農芸化学会2019年度大会、東京農業大学（東京）、2019.3.24-27.
  3. 大橋貴生、窪村有紗、長谷川友香、三﨑亮、藤山和仁：組換え分裂酵母を用いたナリンゲニン二糖配糖体の生産、第70回日本生物工学会大会、関西大学（吹田）、2018.9.5-7.
  4. 大橋貴生、光吉祐太朗、間平由梨佳、三﨑亮、石水毅、藤山和仁：糸状菌Aspergillus aculeatus由来ラムノガラクツロナーゼの酵素特性解析、第37回日本糖質学会年会、仙台国際センター（仙台）、2018.8.28-30.
  5. 大橋貴生、窪村有紗、三﨑亮、藤山和仁：酵母を用いたナリンゲニン7-O-グルコシドin vivo生産における内在性β-グルコシダーゼ遺伝子破壊の効果、日本農芸化学会2018年度大会、名城大学（名古屋）、2018.3.15-18.
  6. 大橋博之、Claudia Wahl、大橋貴生、Lothar Elling、藤山和仁：バクテリア由来l-フコキナーゼ/GDP-l-フコースピロホスホリラーゼを用いたGDP-l-ガラクトースの高生産、日本農芸化学会2018年度大会、名城大学（名古屋）、2018.3.15-18.
  7. 窪村有紗、大橋貴生、長谷川友香、三崎亮、藤山和仁：ナリンゲニン7-O-グルコシドの酵母菌体内生産系の構築、第69回日本生物工学会大会、早稲田大学（東京）、2017.9.11-14.
  8. 窪村有紗、大橋貴生、長谷川友香、三﨑亮、藤山和仁：酵母を用いたナリンゲニン7-O-グルコシドの生産、第18回関西グライコサイエンスフォーラム、京都大学（京都）、2017.5.13.
  9. 西田真実、大橋貴生、Niran Roongsawang、Sutipa Tanapongpipat、藤山和仁：タイ産耐熱性メタノール資化酵母Ogataea thermomethanolica BCC16875 のプロテアーゼ遺伝子破壊による組換えタンパク質生産性向上、日本農芸化学会2017年度大会、京都女子大学（京都）、2017.3.17-20.
  10. 窪村有紗、大橋貴生、長谷川友香、三崎亮、藤山和仁：シロイヌナズナ由来ナリンゲニン7-O-グルコース転移酵素の特性解析、日本農芸化学会2017年度大会、京都女子大学（京都）、2017.3.17-20.
  11. 大橋博之、大橋貴生、三﨑亮、北村進一、藤山和仁：植物細胞壁生合成機構の解明・新規l-Gal転移酵素活性の検出、第67回日本生物工学会大会、城山観光ホテル（鹿児島）、2015.10.26-28.
  12. 大橋博之、大橋貴生、三﨑亮、北村進一、藤山和仁：ペクチンラムノガラクツロナン-II生合成の解明；GDP-l-Gal関連酵素に関する研究、第16回関西グライコサイエンスフォーラム、大阪大学会館講堂（豊中）、2015.5.16.
  13. 大橋貴生、ムスタファ ナビラー サリ、松下宗義、三﨑亮、藤山和仁：高等植物における膜結合型ポリガラクツロナーゼの酵素学的特性解析、日本農芸化学会2015年度大会シンポジウム、岡山大学、岡山（2015）
  14. 間平由梨佳、大橋貴生、藤山和仁：分裂酵母を用いたAspergillus aculeatus由来ラムノガラクツロナーゼの生産、日本農芸化学会2015年度大会、岡山大学（岡山）、2015.3.26-29.
  15. 長谷川友香、大橋貴生、藤山和仁：配糖体エンジニアリングを見据えた柑橘由来 a-ラムノース転移酵素の特性解析、日本農芸化学会2015年度大会、岡山大学（岡山）、2015.3.26-29.
  16. 長谷川友香、大橋貴生、三崎亮、藤山和仁：配糖体エンジニアリングを見据えたブンタン由来 a-ラムノース転移酵素の特性解析、第66回日本生物工学会大会、札幌コンベンションセンター（札幌）、2014.9.9-11.
  17. 金沢孟紀、大橋貴生、Savitree Limtong、藤山和仁：脂質エンジニアリングを目指したタイ王国産高脂質生産酵母における簡易形質転換系の開発、日本農芸化学会2014年度大会、明治大学（川崎）、2014.3.27-30.
  18. 長谷川友香、大橋貴生、藤山和仁：分裂酵母を用いたUDP-Rha生産系の開発、第65回日本生物工学会大会、広島国際会議場（広島）、2013.10.18-20.
  19. Nabilah Sari Mustafa、大橋貴生、石水毅、藤山和仁：Cloning, expression and characterization of polygalacturonase from Arabidopsis thaliana、日本農芸化学会2013年度大会、東北大学（仙台）、2013.3.24-28.
  20. 大橋貴生、酒井香奈江、五ノ井透、藤山和仁：病原性担子菌酵母Cryptococcus neoformans、Malassezia furfur、 Rhodotorula mucilaginosaの細胞表層糖鎖の構造解析、第45回酵母遺伝学フォーラム研究報告会、京都大学宇治キャンパス　おうばくプラザ　きはだホール（宇治）、2012.9.4-6.
  21. 大橋貴生、酒井香奈江、五ノ井透、藤山和仁：病原性担子菌酵母Cryptococcus neoformans、Malassezia furfur、 Rhodotorula mucilaginosaの糖鎖構造解析、日本農芸化学会2012年度大会、京都女子大学（京都）、2012.3.22-26.
  22. 大橋貴生、藤山和仁、竹川薫：分裂酵母におけるヒトハイマンノース型糖鎖の生産、第44回酵母遺伝学フォーラム研究報告会、九州大学医学部百年講堂（福岡）、2011.9.5-7.
  23. 枌誠次郎、大橋貴生、竹川薫：糖転移酵素のゴルジ体局在に関与する分裂酵母Vps74タンパク質の機能解析、平成22年度日本生化学九州支部例会、鹿児島大学（鹿児島）、2010.5.22-23.
  24. 大橋貴生、竹川薫：分裂酵母a1,2ガラクトース転移酵素多重破壊株の糖鎖構造解析、日本農芸化学会2010年度大会、東京大学（東京）、2010.3.27-30.
  25. 大橋貴生、竹川薫：分裂酵母ガラクトース転移酵素多重変異株の諸性質の解析、第16回日本生物工学会九州支部大会、九州工業大学情報工学部（飯塚）、2009.12.05.
  26. 大橋貴生、東田英毅、田中直孝、竹川薫：分裂酵母におけるガラクトース転移酵素遺伝子欠損株の諸性質の解析、第42回酵母遺伝学フォーラム研究報告会、筑波ノバホール（つくば）、2009.07.28-30.
  27. 大橋貴生、浜祐子、竹川薫：分裂酵母ガラクトース遺伝子群の機能解析、平成21年度日本生化学会九州支部例会、九州大学（福岡）、2009.5.16-17.
  28. 大橋貴生、浜祐子、竹川薫：分裂酵母のドリコールリン酸オリゴ糖生合成に関与する糖転移酵素欠損株の糖鎖構造解析、日本農芸化学会2009年度大会、マリンメッセ福岡（福岡）、2009.3.27-29.
  29. 大橋貴生、田中直孝、浜祐子、竹川薫：分裂酵母のN-結合型糖鎖生合成に関与する糖転移酵素欠損株の糖鎖構造解析、日本農芸化学会西日本支部大会、長崎大学（長崎）、2008.9.19-20.
  30. 大橋貴生、竹川薫：分裂酵母och1破壊株の生産するガラクトマンナンの糖鎖構造解析、第40回酵母遺伝学フォーラム研究報告会、大阪大学（吹田）、2007.9.11-13.
  31. 大橋貴生、Nicolai Cramer、石水毅、長谷純宏：UDP糖ピロホスホリラーゼを用いたUDP-ガラクツロン酸の合成、第47回日本植物生理学会年会、筑波大学（つくば）、2006.3.19-21.
  32. 大橋貴生、石水毅、長谷純宏：タンパク質複合体としてのエンドウ芽生え由来ポリガラクツロン酸合成酵素、第25回日本糖質学会年会　ピアザ淡海（大津）、2005.7.20-22.
  33. 大橋貴生、石水毅、長谷純宏：タンパク質複合体としてのエンドウ芽生え由来ポリガラクツロン酸合成酵素、第46回日本植物生理学会年会、新潟コンベンションセンター朱鷺メッセ（新潟）、2005.3.24-26.
  34. 大橋貴生、石水毅、長谷純宏：タンパク質複合体としてのエンドウ上胚軸由来ポリガラクツロン酸合成酵素、第77回日本生化学大会、パシフィコ横浜（横浜）、2004.10.13-16.
  35. 大橋貴生、石水毅、長谷純宏：ペクチン生合成に関与するポリガラクツロン酸合成酵素に関する研究、第5回関西グライコサイエンスフォーラム　大阪市立大学文化交流センター（大阪）、2004.5.29.
  36. 大橋貴生、石水毅、秋田一雅、長谷純宏：Characterization of pectin synthase from pea epicotyl、第76回日本生化学会大会、パシフィコ横浜（横浜）、2003.10.15-18.

他 省略
学会賞等受賞歴
  1. 日本農芸化学会・トピックス賞（2018）
研究費の受け入れ状況
  1. 発酵研究所、一般研究助成、柑橘類の優れた芳香族化合物生産能を利用した酵母によるtrans-ケイ皮酸の発酵生産、2020〜2021年度
  2. 科学研究費補助金　若手研究（B）、新規ゴルジ体局在型ポリガラクツロナーゼが関与するペクチン生合成機構の解明、2014〜2017年度
  3. 大阪大学大学院工学研究科附属フロンティア研究センター 若手教員専門力アッププロジェクト、分裂酵母を生体触媒として用いた新規機能性配糖体の創成、2015年度
  4. 大阪大学大学院工学研究科附属フロンティア研究センター マッチングファンド方式産学連携共同研究テーマ、2013年度
  5. 大阪大学大学院工学研究科附属フロンティア研究センター マッチングファンド方式産学連携共同研究テーマ、2012年度
  6. 千葉大学真菌医学研究センター共同利用・共同研究、病原性担子菌酵母糖タンパク質糖鎖の構造解析、2012年度
  7. 千葉大学真菌医学研究センター共同利用・共同研究、病原性担子菌酵母の細胞表層糖鎖の構造解析、2011年度
  8. 野田産業科学研究所（奨励研究助成）、分裂酵母の糖鎖リモデリングを目指した新奇糖転移酵素遺伝子の機能解析、2011年度
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